淺談怎樣提高飼料中粗蛋白測定的準確度
來源： 本站 類別：實用技術 更新時間：2010-06-02 閱讀次
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淺談怎樣提高飼料中粗蛋白測定的準確度
國標法測定飼料中的粗蛋白采用凱氏定氮法,由于操作的過程比較復雜,如果操作不當,往往會導致檢測結果不準確。以下談談在粗蛋白檢測過程中應注意的事項。本文介紹的是用試劑法測定飼料中粗蛋白的含量，而我們可以用更為簡單方便的方法，那就是直接用KDN-08C粗蛋白測定儀或者也被稱為ZDDN-II凱氏定氮儀，來測定飼料中蛋白質的含量。
1 粗蛋白檢測之采樣過程
樣品采集是否規范,是粗蛋白測定準確與否的基礎。雖然采樣方法隨不同的物品而有所不同,一般來說可根據物品均勻性質分為下列兩類。
1.1 均勻性質物品 對于均勻性質的物品,每一小部分的成分與全部的成分相同,可以采取其任何一部分作為分析樣本。在通常情況下,粉未或研碎的物品可用“四分法”來采樣。
1.2 不均勻性質物品 不均勻的物品,須采取多量樣本,然后在取出的樣本中重復取樣多次,得出一連串逐漸減少的樣本,叫做初級、次級、三級⋯⋯樣本。分析用的樣本可以在最末一級樣本中制備,使樣本能代表全部物品。所采用的取樣方法稱為“幾何法”。
2 粗蛋白檢測之粉碎要求
根據飼料工業標準標定,樣品要求粉碎后全部通過40目(0.45 mm)分樣篩,然后混合均勻放入密封容器。一般飼料樣品顆粒較大,成分復雜,檢測時稱量樣品少,如果細度不夠,必然造成稱樣時樣品不均勻,這是造成結果誤差的重要原因。
3 粗蛋白檢測稱樣要求
用分析天平稱取試樣0.5～1 g (精確到0.000 1) ,一式兩份,要求在稱樣時數量要合適,不能太少也不能太多。一般飼料的稱樣量為0.5 g,若粗蛋白含量為3%～5%的,稱樣量就應高于0.5 g,否則誤差就大。
4 粗蛋白檢測之消化過程
4.1 消化溫度與速度 消化時速度要緩慢,開始要用小火,待樣品焦化后,逐步緩慢加強火力。如果升溫過快,則部分含氮物質來不及轉化成硫酸銨而以氣體形式損失掉,會造成檢測結果偏低。注意經常將濺到瓶壁上的黑渣搖入瓶底硫酸溶液中,以避免消化不完全。消化時要控制好溫度,以380 ℃時最宜。過低則消化時間長,消化不完全,所以消化時最好采用可調式電爐。
4.2 注意問題 消化時還應在凱氏瓶內加幾粒玻璃珠,用以防止硫酸漲沸流失,并在凱氏燒瓶口蓋一個小漏斗,使蒸汽凝結回流,這樣會使測定結果更準確。當消化液達到透明狀態時,并非表示樣品已消化完全,為防止結果偏低,至少還須加熱消化2小時左右。
5 粗蛋白檢測之蒸餾過程
蒸餾過程中必須確保系統封閉良好。樣液加入蒸餾裝置后,應先塞好入口玻璃塞,并在入口處用蒸餾水密封,然后再加入堿液,加入時要緩慢,不可太快,加完堿液后不可再次打開入口玻璃塞。這個順序不能弄錯,否則會造成氨損失,使測定結果偏低。
6 粗蛋白檢測之滴定過程
滴定用的鹽酸標準溶液濃度必須準確。標準溶液在使用前應將溶劑瓶上下搖動幾次,以便使凝結到瓶壁上的水珠完全溶入溶液之中,保證溶液濃度均勻一致。滴定時注意排除滴定管底部的氣泡,確保滴定結果準確。
7 粗蛋白檢測之做好空白檢測工作
空白測定是衡量整個操作過程中一個非常重要的綜合性指標,良好的空白值是保證檢測結果準確的前提,空白值不能超過標準范圍。檢測時如果發現空白值過高,應認真查找原因并及時解決。空白值超標一般是由于所用試劑級別不夠、試驗用水不純或玻璃器皿不干凈等原因造成的。
8 粗蛋白檢測之自我校驗
應定期校驗凱氏定氮儀氣密性。驗證方法:為用分析純硫酸銨代替試樣,按試樣檢測步驟操作,測其含氮量應為21.19% ±012% ,如結果不符則應檢查稱樣、消化、加堿、蒸餾和滴定各步驟是否正確。
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